Поиск биологических поверхностно-активных продуцирующих микроорганизмов в нефтезагрязненных грунтах с целью применения в технологии повышения нефтеотдачи пласта

Сафаров, А.Х.; Курбанова, Г.Г.; Гарипова, А.А.; Курбанова, Д.А.

doi:10.15593/2712-8008/2025.4.16

Поиск биологических поверхностно-активных продуцирующих микроорганизмов в нефтезагрязненных грунтах с целью применения в технологии повышения нефтеотдачи пласта

А.Х. Сафаров, Г.Г. Курбанова, А.А. Гарипова, Д.А. Курбанова

Сведения об авторах

А.Х. Сафаров
Институт «ТатНИПИнефть» ПАО «Татнефть» им. В.Д. Шашина, Альметьевск, Российская Федерация
Г.Г. Курбанова
Институт «ТатНИПИнефть» ПАО «Татнефть» им. В.Д. Шашина, Альметьевск, Российская Федерация
А.А. Гарипова
Институт «ТатНИПИнефть» ПАО «Татнефть» им. В.Д. Шашина, Альметьевск, Российская Федерация
Д.А. Курбанова
Институт «ТатНИПИнефть» ПАО «Татнефть» им. В.Д. Шашина, Альметьевск, Российская Федерация

https://doi.org/10.15593/2712-8008/2025.4.16

Настоящее исследование посвящено поиску и выделению микроорганизмов-продуцентов биологических поверхностно-активных веществ (биоПАВ) из нефтезагрязненных грунтов для последующего применения в экологически безопасных технологиях повышения нефтеотдачи пластов (ПНП). Актуальность работы обусловлена необходимостью разработки эффективных и экологичных методов извлечения трудноизвлекаемых запасов (ТРИЗ), минимизирующих риски для окружающей среды в сравнении с традиционными физико-химическими методами ПНП. Из нефтезагрязненных почвенных проб, в соответствии с ГОСТ 17.4.4.02-2017, было выделено и идентифицировано 20 штаммов углеводородокисляющих микроорганизмов. Микробиологический анализ (МУК 4.2.3695-21) подтвердил отсутствие патогенной микрофлоры. Шесть выделенных штаммов (Bacillus spp. 10RE, Citrobacter spp. 14RE, Bacillus spp. 17RE, Pseudomonas spp. 18RE, Bacillus spp. 21RE, Rhodococcus spp. 24RE) показали выраженную способность к биосинтезу ПАВ. Ключевым доказательством послужило значительное снижение межфазного натяжения (МФН) культуральной жидкости при ее развитии на нефти, использующейся в качестве единственного источника углерода. Значения МФН на среде с нефтью варьировались от 2,5 до 4,5 мН/м, что существенно ниже показателей на среде с сахарозой 3,5–13,5 мН/м, и свидетельствует о высокой эффективности продуцируемых биоПАВ. Важным для применения в реальных нефтяных пластах является адаптивность микроорганизмов к пластовым условиям. Исследование физиологических характеристик показало, что отобранные штаммы обладают широкими диапазонами толерантности: к температуре (от 5°C до ≥ 50 °C) и солености (от 0 до 80–240 г NaCl/л). Например, Bacillus spp. 21RE рос при солености до 240 г/л, а Pseudomonas spp. 18RE и Citrobacter spp.14RE проявляли термотолерантность. Полученные результаты демонстрируют высокий потенциал выделенных штаммов для разработки инновационных биотехнологий. Их способность эффективно продуцировать биоПАВ непосредственно на нефтяном субстрате и выживать в экстремальных условиях пласта (высокая минерализация, широкий температурный диапазон) делает их перспективными агентами для микробиологических методов увеличения нефтеотдачи (ММУН). Применение таких микроорганизмов и их метаболитов позволит снизить МФН на границе «нефть – вода», мобилизовать капиллярно-удержанную нефть и повысить коэффициент извлечения нефти (КИН), одновременно способствуя биоремедиации загрязненных объектов.

Ключевые слова

повышение нефтеотдачи пластов (ПНП)биологические поверхностно-активные вещества (биоПАВбиосурфактанты)микробиологические методы увеличения нефтеотдачимежфазное натяжение (МФН)нефтезагрязненные грунтыбиоремедиацияуглеводородокисляющие микроорганизмыBacillusPseudomonasRhodococcus.

Search for Biosurfactant-Producing Microorganisms in Oil-Contaminated Soils for Use in Enhanced Oil Recovery Technology

This study focuses on the identification and isolation of microorganisms producing biological surfactants (biosurfactants) from oil-contaminated soils for subsequent use in environmentally friendly enhanced oil recovery (EOR) technologies. The relevance of this work stems from the need to develop effective and environmentally friendly methods for extracting hard-to-recover reserves (HRR) that minimize environmental risks compared to traditional physical and chemical EOR methods. Twenty strains of hydrocarbon-oxidizing microorganisms were isolated and identified from oil-contaminated soil samples in accordance with GOST 17.4.4.02-2017. Microbiological analysis (MUK 4.2.3695-21) confirmed the absence of pathogenic microflora. Six isolated strains (Bacillus spp. 10RE, Citrobacter spp. 14RE, Bacillus spp. 17RE, Pseudomonas spp. 18RE, Bacillus spp. 21RE, Rhodococcus spp. 24RE) demonstrated a pronounced capacity for surfactant biosynthesis. Key evidence was a significant decrease in the interfacial tension (IFT) of the culture fluid during its development on oil used as the sole carbon source. The values of the IFT in the medium with oil varied from 2.5 to 4.5 mN/m, which is significantly lower than the values in the medium with sucrose 3.5–13.5 mN/m, and indicates the high efficiency of the produced biosurfactants. The adaptability of microorganisms to reservoir conditions is important for application in real oil reservoirs. A study of their physiological characteristics revealed that the selected strains showed wide tolerance ranges: temperature (from 5°C to ≥ 50°C) and salinity (from 0 to 80–240 g NaCl/L). For example, Bacillus spp. 21RE grew at salinities up to 240 g/L, while Pseudomonas spp. 18RE and Citrobacter spp. 14RE exhibited thermotolerance. The obtained results demonstrate the high potential of the isolated strains for the development of innovative biotechnologies. Their ability to efficiently produce biosurfactants directly on the oil substrate and survive in extreme reservoir conditions (high salinity, wide temperature range) makes them promising agents for microbiologically enhanced oil recovery (MEOR). The use of these microorganisms and their metabolites will reduce the IFT at the oil-water interface, mobilize capillary-trapped oil, and increase the oil recovery factor, while simultaneously facilitating the bioremediation of contaminated sites.

Keywords

enhanced oil recoverybiological surfactantsmicrobiological methods of enhanced oil recoveryinterfacial tensionoil-contaminated soilsbioremediationhydrocarbon-oxidizing microorganismsBacillusPseudomonasRhodococcus.

Литература

1.Banat, I.M. Biosurfactant production and possible uses in microbial enhanced oil recovery and oil pollution remediation: a review / I.M. Banat // Bioresource Technol. – 1995. – Vol. 51. – P. 1–12. Scholar
2.Биометоды увеличения нефтеотдачи / Н.А. Еремин, Р.Р. Ибатулин, Т.Н. Назина, А.А. Ситников // РГУ нефти и газа им. И.М. Губкина. – М., 2003. – 125 с. Scholar
3.Филогенетическое разнообразие аэробных сапротрофных бактерий из нефтяного месторождения Дацин / Т.Н. Назина, А.А. Григорьян, Сюз Ян-Фен, Д.Ш. Соколова, Е.В. Новикова, Т.П. Турова, А.Б. Полтараус, С.С. Беляев, М.В. Иванов // Микробиология. – 2002. – Т. 71, № 1. – С. 103–110. Scholar
4.Magot, M. Indigenous microbial communities in oil fields / M. Magot // Petroleum Microbiology. American Society of Microbiology. – Washington, DC, USA. – 2005. – P. 21–33. Scholar
5.Roles of thermophilic thiosulfate-reducing bacteria and methanogenic archaea in the biocorrosion of oil pipelines / R. Liang, R.S. Grizzle, K.E. Duncan, M.J. Mcinnery, J.M. Sufilta // Front. Microbiol. – 2014. – Vol. 5. – № 89. DOI: 10.3389/fmicb.2014.00089 Scholar
6.Radiotracer assay of microbial processes in petroleum reservoirs / T.N. Nazina, N.M. Shestakova, V.S. Ivoilov, N.K. Kostrukova, S.S. Belyaev, M.V. Ivanov // Adv. Biotech. & Micro. – 2017. – Vol. 2, no. 4. – Article. 555591. DOI: 10.19080/AIBM.2017.02.555591. Scholar
7.Genome-resolved metaanalysis of the microbiome in oil reservoirs worldwide / K.J. Hidalgo, I.N. Sierra-Garcia, G. Zafra, V.M. de Oliveira // Microorganisms. – 2021. – Vol. 9. – Article 1812. DOI: 10.3390/microorganisms9091812 Scholar
8.Metagenomic investigation of a low diversity, high salinity offshore oil reservoir / G. Scheffer, C.R.J. Hubert, D.R. Enning, S. Lahme, J. Mand, J.R. de Rezende // Microorganisms. – 2021. – Vol. 9. – Article 2266. DOI: 10.3390/microorganisms9112266 Scholar
9.Gieg, L.M. Biological souring and mitigation in oil reservoirs / L.M. Gieg, T.R. Jack, J.M. Foght // Appl. Microbiol. Biotechnol. – 2011. – Vol. 92. – P. 263–282. DOI: 10.1007/s00253-011-3542-6 Scholar
10.Head, I.M. Life in the slow lane: biogeochemistry of biodegraded petroleum containing reservoirs and implications for energy recovery and carbon management / I.M. Head, N.D. Gray, S.R. Larter // Front. Microbiol. – 2014. – Vol. 5. – Article 566. DOI: 10.3389/fmicb.2014.00566 Scholar
11.Biodegradation of oil in uplifted basins prevented by deep-burial sterilization / A. Wilhelms, S.R. Larter, I. Head, P. Farrmond, R. di-Primio, C. Zwach // Letter to Nature. – 2001. – Vol. 411. – P. 1034–1036. DOI: 10.1038/35082535 Scholar
12.Vasilyeva, G. Adsorptive bioremediation of soil highly contaminated with crude oil / G. Vasilyeva, V. Kondrashina, J.-J. Ortega-Calvo // Science of The Total Environment. – 2020. – Vol. 706, № 135739. Scholar
13.Булатов, В.И. Отходы нефтегазового комплекса как технологический индикатор геоэкологического состояния регионов России / В.И. Булатов, Н.О. Игенбаева, О.А. Нанишвили // Бюллетень науки и практики. – 2021. – Т. 7, № 8. – С. 46–55. Scholar
14.Классификация методов локализации и ликвидации загрязнений почвы нефтью и нефтепродуктами / Р.Ф. Сагитов, С.В. Шабанова, С.П. Василевская [и др.] // Наука и современность. – 2016. – № 1. – С. 202– Scholar
15.Шамак, Д.Н. Методы ликвидации нефтяных загрязнений / Д.Н. Шамак // Тезисы докладов IV Международной научно-практической конференции «Экология и защита окружающей среды», 16–17 мая 2018. – Минск: Белорусский государственный университет. – 2018. – С. 226–228. Scholar
16.A review with recent advancements on bioremediation-based abolition of heavy metals / N. Gaur, G. Flora, M. Yadav, A. Tiwari // Environmental Science: Processes & Impacts. – 2014. – Vol. 16, iss. 2. – P. 180-193. Scholar
17.Петрова, Т.А. Виды мелиорантов для рекультивации техногенного нарушения территории горной промышленности / Т.А. Петрова, Э. Рудзиш // Горный информационно аналитический бюллетень. – 2021. – № 4. – С. 100-112. Scholar
18.Rehabilitation of Disturbed Lands with Industrial Wastewater Sludge / Т.А. Petrova, E. Rudzisha, A.V. Alekseenko [et al.] // Minerals. – 2022. – Vol. 12, iss. 3. – № 376. Scholar
19.Коган, В.Е. Стеклообразные пеноатериалы неорганической и органической природы и перспективы очистки окружающей среды от загрязнений нефтью и нефтепродуктами / В.Е. Коган // Записки Горного института. – 2016. – Т. 218. – С. 331-338. Scholar
20.Farag, S. Statistical optimization of crude oil biodegradation by a local marine bacterium isolate Pseudomonas sp. sp48 / S. Farag, N.A. Soliman, Y.R. Abdel-Fattah // Journal of Genetic Engineering and Biotechnology. – 2018. – Vol. 16, iss. 2. – P. 409-420. Scholar
21.Мязин, В.А. Влияние гранулированного активированного угля на скорость биоремедиации почв Мурманской области, исторически загрязненных нефтепродуктами / В.А. Мязин, Е.А. Исакова, Г.К. Васильева // Проблемы региональной экологии. – 2020. – № 2. – С. 20-26. Scholar
22.Finley, S.D. In silico feasibility of novel biodegradation pathways for 1, 2, 4-trichlorobenzene / S.D. Finley, L.J. Broadbelt, V. Hatzimaniakitis // BMC Systems Biology. – 2010. – Vol. 4, № 7. Scholar
23.Kumar, R. Oil spill removal by mycoremediation / R. Kumar, A. Kaur // Microbial Action on Hydrocarbons. – 2018. – P. 505-526. Scholar
24.Optimization of operating parameters to remove and recover crude oil from contaminated soil using subcritical water extraction process / Taki G., Islam M.N., Park Seong-Jae, Park Jeong-Hun // Environmental Engineering Research. – 2018. – Vol. 23, iss. 2. – P. 175-180. Scholar
25.Dhiraj Kumar Chaudhary. New insights into bioremediation strategies for oil-contaminated soil in cold environments / Dhiraj Kumar Chaudhary, Jaisoo Kim // International Biodeterioration & Biodegradation. – 2019. – Vol. 142. – P. 58–72. Scholar
26.Ajona, M. Bioremediation of petroleum contaminated soils – A review / M. Ajona, P. Vasanthi // Materials Today: Proceedings. – 2021. – Vol. 45, part 7. – P. 7117-7122. Scholar
27.Isolation of hydrocarbonoclastic bacteria from bilge oil contaminated water / C. Sivaramam, A. Ganguly, M. Nikolausz, S. Mutnuri // International Journal of Environmental Science & Technology. – 2011. – Vol. 8. – P. 461-470. Scholar
28.Kuyukina, M.S. Bioremediation of contaminated environments using Rhodococcus / M.S. Kuyukina, I.B. Ivshina // Biology of Rhodococcus. – Cham: Springer, 2019. – P. 231-270. Scholar
29.Al-Nasrawi, H. Biodegradation of crude oil by fungi isolated from Gulf of Mexico / H. Al-Nasrawi // Journal of Bioremediation and Biodegradation. – 2012. – Vol. 3, iss. 4. – № 1000147. Scholar
30.Исакова, Е.А. Деструкционная активность углеводородокисляющих микроциентов, выделенных из субстратов прибрежных территорий Баренцева и Белого морей / Е.А. Исакова, М.В. Корнейкова // Вестник Мурманского государственного технического университета. – 2021. – Т. 24, № 2. – С. 178-189. Scholar
31.Пат. № 2764305 РФ. Способ очистки почв от нефтяных загрязнений методом гидропосева биосмеси с применением микроводорослей Chlorella vulgaris globosa IPPAS C-2024 / Корчагина Ю.С., Щемелинина Т.Н. Опубл.17.01.2022. Бюл. № 2. Scholar
32.Пат. № 2703500 РФ. Нефтеокисляющий биопрепарат, биосборент на его основе и способ его приготовления / Щемелинина Т.Н., Анчутова Е.М. Опубл.17.10.2019. Бюл. № 29. Scholar
33.Биоремедиация от полусуклис ароматичодробархонных и среозоте- контаминатов соли бу Peinophoria incarnata KUCS836 / Hwanhwi Lee, Seo Yeong Yun, Seokyoon Jang [et al.] // Bioremediation Journal. – 2015. – Vol. 19. 41, iss. 1. – P. 1-8. Scholar
34.Hesnawi, R.M. Effect of nutrient source on indigenous biodegradation of diesel fuel contaminated soil / R.M. Hesnawi, M.M. Adbeib // APCBEE Procedia. – 2013. – Vol. 5. – P. 557-561. Scholar
35.Bioremediation of mangroves impacted by petroleum / Santos H.F., Carmo F.L., Paes J.E.S. [et al.] // Water Air Soil Pollut. – 2011. – Vol. 216. – P. 329-350. Scholar
36.ГОСТ 17.4.4.02-2017. Охрана природы. Почвы. Методы отбора и подготовки проб для химического, бактериологического, гельминтологического анализа. – М., 2017. Scholar
37.МУК 4.2.3695-21. Методы контроля. Биологические и микробиологические факторы. Методы микробиологического контроля почвы. Методические указания. – М., 2021. Scholar
38.СанПиН 1.2.3685-21. Гигиенические нормативы и требования к обеспечению безопасности и (или) безвредности для человека факторов среды обитания. – М., 2021. Scholar
39.Czinkóczky, R. Techno-economic assessment of Bacillus fermentaton to produce surfactin and lichenysin / R. Czinkóczky, A. Németh // Biochem. Eng. J. – 2020. – Vol. 163. – Article 107719. DOI: 10.1016/j.bej.2020.107719 Scholar
40.Microbial biosurfactants: a broad analysis of properties, applications, biosynthesis and technoeconomicall assessment of rhamnolipid production / L.F. Moutinho, F.R. Moura, R.C. Silvestre, A.S. Romão-Dumaresq // Biotechnol. Prog. – 2021. – Vol. 37. – № 2. – Article e3093. DOI: 10.1002/bptr.3093 Scholar
41.Proposed minimal standards for the use of genome data for the taxonomy of prokaryotes / J. Chun, A. Oren, A. Ventosa, H. Christensen, D.R. Arahal, M.S. da Costa, A.P. Rooney, H. Yi, X.W. Xu, S. De Meyer, M.E. Trujillo // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. – 2018. – Vol. 68. – P. 461-466. DOI: 10.1099/ijsem.0.002516 Scholar
42.Mnif, S. Isolation and characterization of Halomonas sp. strain C2SS100, a hydrocarbon-degrading bacterium under hypersaline conditions / S. Mnif, M. Chamkha, S. Sayadi // J. Appl. Microbiol. – 2009. – Vol. 107. – P. 785-794. DOI: 10.1111/j.1365-2672.2009.04251 Scholar
43.Fathepure, B.Z. Recent studies in microbial degradation of petroleum hydrocarbons in hypersaline environments / B.Z. Fathepure // Front. Microbiol. – 2014. – Vol. 5. – Article 173. – P. 1-16. DOI: 10.3389/fmicb.2014.0017 Scholar
44.Youssef, N. Microbial processes in oil fields: culprits, problems and opportunities / N. Youssef, M.S. Elshahed, M.J. McInerney // Adv. Appl. Microbiol. – 2009. – Vol. 66. – P. 141-252. DOI: 10.1016/S0065-2164(08)00806-X Scholar
45.Functional and phylogenetic microbial diversity in formation waters of a low-temperature carbonate petroleum reservoir / T.N. Nazina, N.M. Shestakova, N.K. Pavlova, Y.V. Tatarkin, V.S. Ivoilov, M.R. Khasmetdinov, D.Sh. Sokolova, T.L. Babich, T.P. Tourova, A.B. Poltaraus, S.S. Belyaev, M.V. Ivanov // Int. Biodeterior. Biodegradation. – 2013. – Vol. 81. – P. 71-81. DOI: 10.1016/j.ibiod.2012.07.008 Scholar

1.Banat I.M. Biosurfactant production and possible uses in microbial enhanced oil recovery and oil pollution remediation: a review. Bioresource Technol., 1995, vol. 51, pp. 1-12. DOI: 10.1016/0960-8524(94)00101-6 Scholar
2.Eremin N.A., Ibatulin R.R., Nazina T.N., Simikov A.A. Biometody uvelicheniia nefteotdachi [Biomethods for enhanced oil recovery]. Rossiiskii gosudarstvennyi universitet nefti i gaza. Moscow, 2003, 125 p. Scholar
3.Nazina T.N., Grigor'ian A.A., Ian-Fen Siue, Sokolova D.Sh., Novikova E.V., Turova T.P., Poltaraus A.B., Beliaev S.S., Ivanov M.V. Filogeneticheskoe raznoxobrazie aerobnykh saprotrofnykh bakterii iz neftianogo mestorozhdeniia Datsin [Phylogenetic diversity of aerobic saprotrophic bacteria from the Daqing Oilfield]. Mikrobiologija, 2002, vol. 71, no. 1, pp. 103-110. Scholar
4.Magot M. Indigenous microbial communities in oil fields. Petroleum Microbiology. American Society of Microbiology. Washington, DC, USA, 2005, pp. 21-33. DOI: 10.1128/9781555871589.ch2 Scholar
5.Liang R., Grizzle R.S., Duncan K.E., Mcinerney M.J., Sufita J.M. Roles of thermophilic thiosulfate-reducing bacteria and methanogenic archaea in the biocorrosion of oil pipelines. Front. Microbiol., 2014, vol. 5, no. 89. DOI: 10.3389/fmicb.2014.00889 Scholar
6.Nazina T.N., Shestakova N.M., Ivoilov V.S., Kostrukova N.K., Belyaev S.S., Ivanov M.V. Radiotracer assay of microbial processes in petroleum reservoirs. Adv. Biotech. & Micro, 2017, vol. 2, no. 4, Article. 555591. DOI: 10.19080/AIBM.2017.02.555591 Scholar
7.Hidalgo K.J., Sierra-Garcia I.N., Zafra G., de Oliveira V.M. Genome-resolved metaanalysis of the microbiome in oil reservoirs worldwide. Microorganisms, 2021, vol. 9, Article 1812. DOI: 10.3390/microorganisms9091812 Scholar
8.Scheffer G., Hubert C.R.J., Enning D.R., Lahme S., Mand J., de Rezende J.R. Metagenomic investigation of a low diversity, high salinity offshore oil reservoir. Microorganisms, 2021, vol. 9, Article 2266. DOI: 10.3390/microorganisms9112266 Scholar
9.Gieg L.M., Jack T.R., Foght J.M. Biological souring and mitigation in oil reservoirs. Appl. Microbiol. Biotechnol., 2011, vol. 92, pp. 263-282. DOI: 10.1007/s00253-011-3542-6 Scholar
10.Head I.M., Gray N.D., Larter S.R. Life in the slow lane: biogeochemistry of biodegraded petroleum containing reservoirs and implications for energy recovery and carbon management. Front. Microbiol., 2014, vol. 5, Article 566. DOI: 10.3389/fmicb.2014.00566 Scholar
11.Wilhelms A., Larter S.R., Head I., Farrmond P., di-Primio R., Zwach C. Biodegradation of oil in uplifted basins prevented by deep-burial sterilization. Letter to Nature, 2001, vol. 411, pp. 1034-1036. DOI: 10.1038/35082535 Scholar
12.Vasilyeva G., Kondrashina V., Ortega-Calvo J.-J. Adsorptive bioremediation of soil highly contaminated with crude oil. Science of The Total Environment, 2020, vol. 706, no. 135739. Scholar
13.Bulatov V.I., Igenbaeva N.O., Nanishvili O.A. Otkhody neftegazovogo kompleksa kak tekhnologicheskii indikator geoekologicheskogo sostoianiia regionov Rossii [Waste of the oil and gas complex as a technological indicator of the geoecological state of Russian regions]. Biulleten' nauki i praktiki, 2021, vol. 7, no. 8, pp. 46-55. Scholar
14.Sagitov R.F., Shabanova S.V., Vasilevskaia S.P. [et al.] Klassifikatsiia metodov lokalizatsii i likvidatsii zagriaznenii pochvy neft'iu i nefteproduktami [Classification of methods for localization and elimination of soil contamination with oil and oil products]. Nauka i sovremennost', 2016, no. 1, pp. 202- Scholar
15.Shamak D.N. Metody likvidatsii neftianykh zagriaznenii [Methods for eliminating oil spills]. Tezisy dokladov IV Mezhdunarodnoi nauchno-prakticheskoi konferentsii “Ekologiia i zashchita okruzhaiushchei sredy”, 16-17 May 2018. Minsk: Belorusskii gosudarstvennyi universitet, 2018, pp. 226-228. Scholar
16.Gaur N., Flora G., Yadav M., Tiwari A. A review with recent advancements on bioremediation-based abolition of heavy metals. Environmental Science: Processes & Impacts, 2014, vol. 16, iss. 2, pp. 180-193. Scholar
17.Petrova T.A., Rudzish E. Vidy meliorantov dlia rekul'tivatsii tekhnogennogo narusheniia territorii gornoi promyshlennosti [Types of ameliorants for the reclamation of technogenic disturbance of the mining industry territory]. Gornyi informatsionno analiticheskii biulleten', 2021, no. 4, pp. 100-112. Scholar
18.Petrova T.A., Rudzisha E., Alekseenko A.V. [et al.] Rehabilitation of Disturbed Lands with Industrial Wastewater Sludge. Minerals, 2022, vol. 12, iss. 3, no. 376. Scholar
19.Kogan V.E. Stekloobraznye penoaterialy neorganicheskoi i organicheskoi prirody i perspektivy ochistki okruzhaiushchei sredy ot zagriaznenii neft'iu i nefteproduktami [Glass-like foam materials of inorganic and organic nature and prospects for environmental remediation from oil and oil products pollution]. Zapiski Gornogo instituta, 2016, vol. 218, pp. 331-338. Scholar
20.Farag S., Soliman N.A., Abdel-Fattah Y.R. Statistical optimization of crude oil biodegradation by a local marine bacterium isolate Pseudomonas sp. sp48. Journal of Genetic Engineering and Biotechnology, 2018, vol. 16, iss. 2, pp. 409-420. DOI: 10.1016/j.jgeb.2018.01.001 Scholar
21.Miazin V.A., Isakova E.A., Vasil'eva G.K. Vliianie granulirovannogo aktivirovannogo uglia na skorost' bioremediatsii pochv Murmanskoi oblasti, istoricheski zagraziennykh nefteproduktami [The effect of activated carbon on the bioremediation rate of the soils historically contaminated with oil products in the Murmansk region]. Problemy regional'noi ekologii, 2020, no. 2, pp. 20-26. DOI: 10.24411/1728-323X-2020-12020 Scholar
22.Finley S.D., Broadbelt L.J., Hatzimanikatis V. In silico feasibility of novel biodegradation pathways for 1, 2, 4-trichlorobenzene. BMC Systems Biology, 2010, vol. 4, no. 7. DOI: 10.1186/1752-0509-4-7 Scholar
23.Kumar R., Kaur A. Oil spill removal by mycoremediation. Microbial Action on Hydrocarbons, 2018, pp. 505-526. DOI: 10.1007/978-981-13-1840-5_20 Scholar
24.Taki G., Islam M.N., Park Seong-Jae, Jeong-Hun Park. Optimization of operating parameters to remove and recover crude oil from contaminated soil using subcritical water extraction process. Environmental Engineering Research, 2018, vol. 23, iss. 2, pp. 175-180. DOI: 10.4491/eor.2017.145 Scholar
25.Dhiraj Kumar Chaudhary, Jaisoo Kim. New insights into bioremediation strategies for oil-contaminated soil in cold environments. International Biodeterioration & Biodegradation, 2019, vol. 142, pp. 58-72. DOI: 10.1016/j.ibiod.2019.05.001 Scholar
26.Ajona M., Vasanthi P. Bioremediation of petroleum contaminated soils - A review. Materials Today: Proceedings, 2021, vol. 45, part 7, pp. 7117-7122. DOI: 10.1016/j.matpr.2021.01.949 Scholar
27.Sivaramam C., Ganguly A., Nikolausz M., Mutnuri S. Isolation of hydrocarbonoclastic bacteria from bilge oil contaminated water. International Journal of Environmental Science & Technology, 2011, vol. 8, pp. 461-470. DOI: 10.1007/BF03236232 Scholar
28.Kuyukina M.S., Ivshina I.B. Bioremediation of contaminated environments using Rhodococcus. Biology of Rhodococcus. Cham: Springer, 2019, pp. 231-270. DOI: 10.1007/978-3-030-11461-9_9 Scholar
29.Al-Nasrawi H. Biodegradation of crude oil by fungal isolated from Gulf of Mexico. Journal of Bioremediation and Biodegradation, 2012, vol. 3, iss. 4, no. 1000147. DOI: 10.4172/2155-6199.1000147 Scholar
30.Isakova E.A., Korneikova M.V. Destruktionsnaia aktivnost' uglevodorodokisliaishchikh mikromitsetov, vydelennykh iz substratov pribrezhnykh territorii Barentseva i Belogo morei [Destructive activity of hydrocarbon-oxidizing micromycetes extracted from the substrates of the coastal areas, the Barents and White Seas]. Vestnik Murmanskogo gosudarstvennogo tekhnicheskogo universiteta, 2021, vol. 24, no. 2, pp. 178-189. DOI: 10.21443/1560-9278-2021-24-2-178-189 Scholar
31.Korchagina Iu.S., Shchemelinina T.N. Sposob ochistki pochv ot neftianykh zagriaznenii metodom gidroposeva biosmesi s primeneniem mikrovodoroslei Chlorella vulgaris globosa IPPAS C-2024 [A method for cleaning soils from oil pollution by hydroseeding a bio-mixture using microalgae Chlorella vulgaris globosa IPPAS C-2024]. Patent Rossiiskaja Federatsiia no. 2764305 (2022). Scholar
32.Shchemelinina T.N., Anchugova E.M. Nefteokisliaishchi biopreparat, biosorbent na ego osnove i sposob ego prigotovleniia [Oil-oxidizing biopreparation, biosorbent based on it and method of its preparation]. Patent Rossiiskaja Federatsiia no. 2703500 (2019). Scholar
33.Hwanhwi Lee, Seo Yeong Yun, Seokyoon Jang et al. Bioremediation of polycyclic aromatic hydrocarbons in creosote- contaminated soil by Peniophora incarnata KUC8836. Bioremediation Journal, 2015, vol. 19, 41, iss. 1, pp. 1-8. DOI: 10.1080/10889688.2014.939136 Scholar
34.Hesnawi R.M., Adbeib M.M. Effect of nutrient source on indigenous biodegradation of diesel fuel contaminated soil. APCBEE Procedia, 2013, vol. 5, pp. 557-561. DOI: 10.1016/j.apcbee.2013.05.093 Scholar
35.Santos H.F., Carmo F.L., Paes J.E.S. et al. Bioremediation of mangroves impacted by petroleum. Water Air Soil Pollut, 2011, vol. 216, pp. 329-350. DOI: 10.1007/s11270-010-0536-4 Scholar
36.GOST 17.4.4.02-2017. Okhrana prirody. Pochvy. Metody otbora i podgotovki prob dlia khimicheskogo, bakteriologicheskogo, gel'mintologicheskogo analiza [GOST 17.4.4.02-2017. Environmental Protection. Soils. Methods of Sampling and Preparing Samples for Chemical, Bacteriological, and Helminthological Analysis]. Moscow, 2017. Scholar
37.MUK 4.2.3695-21. Metody kontrolia. Biologicheskie i mikrobiologicheskie faktory. Metody mikrobiologicheskogo kontrolia pochvy. Metodicheskie ukazaniia [MUK 4.2.3695-21. Control Methods. Biological and Microbiological Factors. Methods of Microbiological Soil Monitoring. Guidelines]. Moscow, 2021. Scholar
38.SanPiN 1.2.3685-21. Gigienicheskie normativy i trebovaniia k obespecheniiu bezopasnosti i (ili) bezvrednosti dlia cheloveka faktorov sredy obitaniia [SanPiN 1.2.3685-21. Hygienic standards and requirements for ensuring the safety and (or) harmlessness of environmental factors for humans]. Moscow, 2021. Scholar
39.Czinkóczky R., Németh A. Techno-economic assessment of Bacillus fermentation to produce surfactin and lichenysin. Biochem. Eng. J., 2020, vol. 163, Article 107719. DOI: 10.1016/j.bej.2020.107719 Scholar
40.Moutinho L.F., Moura F.R., Silvestre R.C., Romão-Dumaresq A.S. Microbial biosurfactants: a broad analysis of properties, applications, biosynthesis and technoeconomical assessment of rhamnolipid production. Biotechnol. Prog., 2021, vol. 37, no. 2, Article e3093. DOI: 10.1002/btpr.3093 Scholar
41.Chun J., Oren A., Ventosa A., Christensen H., Arahal D.R., da Costa M.S., Rooney A.P., Yi H., Xu X.W., De Meyer S., Trujillo M.E. Proposed minimal standards for the use of genome data for the taxonomy of prokaryotes. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2018, vol. 68, pp. 461-466. DOI: 10.1099/ijsem.0.002516 Scholar
42.Mnif S., Chamkha M., Sayadi S. Isolation and characterization of Halomonas sp. strain C2SS100, a hydrocarbon-degrading bacterium under hypersaline conditions. J. Appl. Microbiol., 2009, vol. 107, pp. 785-794. DOI: 10.1111/j.1365-2672.2009.04251 Scholar
43.Fathepure B.Z. Recent studies in microbial degradation of petroleum hydrocarbons in hypersaline environments. Front. Microbiol., 2014, vol. 5, Article 173, pp. 1-16. DOI: 10.3389/fmicb.2014.0017 Scholar
44.Youssef N., Elshahed M.S., McInerney M.J. Microbial processes in oil fields: culprits, problems and opportunities. Adv. Appl. Microbiol., 2009, vol. 66, pp. 141-252. DOI: 10.1016/S0065-2164(08)00806-X Scholar
45.Nazina T.N., Shestakova N.M., Pavlova N.K., Tatarkin Y.V., Ivoilov V.S., Khisametdinov M.R., Sokolova D.Sh., Babich T.L., Tourova T.P., Poltaraus A.B., Belyaev S.S., Ivanov M.V. Functional and phylogenetic microbial diversity in formation waters of a low-temperature carbonate petroleum reservoir. Int. Biodeterior. Biodegradation, 2013, vol. 81, pp. 71-81. DOI: 10.1016/j.ibiod.2012.07.008 Scholar

Другие статьи выпуска

Весь выпуск (Том 25, № 4, 2025)

Показаны 12 из 15

Скачать PDF

Информация о статье

Опубликована: 21.11.2025
В выпуске: 21.11.2025
Выпуск: Том 25, № 4 (2025)